TP 6,7

Cards (46)

  • Riscos associados ao trabalho laboratorial em Imunologia
    • Níveis de segurança biológica
    • Métodos de Imunoensaio
  • Métodos serológicos com base em interações primárias
  • Métodos serológicos com base em reações 2árias (Ensaios indiretos)

    • Reações de precipitação
    • Reações de aglutinação
    • Reações de Fixação do complemento – Lise (ausência) de células alvo
  • Métodos serológicos com base em reações 1árias ou Imunoensaios com substâncias marcadas (Ensaios diretos)

    Permitem a visualização e/ou quantificação da ligação direta do AG ao AC
  • Algumas reações antigénio/anticorpo não são detetadas por precipitação ou aglutinação
  • Ligando
    Substância que vai ser medida – molécula a que se liga outra molécula de uma configuração complementar, geralmente liga-se à substância que o teste está a tentar detetar
  • Receptor
    Liga-se à molécula alvo específica
  • Imunoensaios Homogéneos
    • São métodos rápidos em que a interação do AG com o AC modula a atividade do marcador
    • Nenhum elemento está fixo a uma fase sólida e não existe etapa de separação
    • Têm sido geralmente utilizados para a medição de pequenos analitos, tais como drogas de abuso e fármacos
  • Imunoensaios Heterogéneos
    • Métodos em que um dos elementos do ensaio está fixo a uma fase sólida
    • A reação antigénio-anticorpo não interfere com a atividade do elemento marcado
    • É necessário uma etapa de separação das frações livres em relação às conjugadas
  • Os métodos heterogéneos apresentam vantagens sobre os homogéneos
  • Vantagens dos métodos heterogéneos
    • Sensibilidade
    • Especificidade
  • Reações 1árias
    • São métodos que envolvem a ligação direta ao anticorpo
    • Baseiam-se no mesmo princípio, mas a forma de detetar a união específica é diferente
  • Suporte para Reações 1árias
    • Plástico (ex: microplaca de poliestireno)
    • Papel de nitrocelulose ou nylon após transferência do gel de electroforese
    • Culturas celulares ou tecidos
  • Ensaios Imunoenzimáticos (EIA)

    • Utilizados para detetar/quantificar Ac e Ag em fluidos biológicos, utilizando enzimas em vez de isótopos radioativos
    • Marcadores enzimáticos: fosfatase alcalina, peroxidase, glucose-6-fosfato desidrogenase, β-galactosidase, etc.
    • Sistemas de deteção: fotométricos, de fluorescência e de quimiluminescência
  • Peroxidase (Horseradish peroxidase - HRP)

    • Catalisa oxidação de substâncias pelo peróxido de hidrogénio
    • Substratos da HRP: O-phenylenediamine dihydrochloride (OPD), 5-aminosalicylic acid (5AS), Tetramethylbenzidine (TMB), 2,2 azino-di(3-ethylbenzothiazoline) (ABTS), 4-Cloronaphthol, Diaminobenzidine (DAB)
  • Fosfatase Alcalina (AP)

    • Catalisa hidrólise não específica de ésteres do ácido monofosfórico em fosfato inorgânico (reação em pH alcalino)
    • Substratos da AP: p-nitrofenilfosfato (p-NPP), 5-bromo-4-cloro-3-indolil fosfato /nitro blue tetrazolium (BCIP/NTP)
  • Ensaios Imunoenzimáticos (EIA)
    • ELISA
    • ELISPOT
    • Immuno-blot
    • Western-blot
    • Imunoperoxidase
  • ELISA
    Técnica bioquímica que permite quantificar o AC ou AG na ordem dos nanogramas (10-9 g)
  • Tipos de ELISA
    • ELISA direto
    • ELISA indireto
    • Imobilização não específica
    • Imobilização específica
    • ELISA de captura ou em "sandwich"
    • ELISA competitivo versus não competitivo
  • ELISA direto
    A enzima reveladora está ligada ao AC que se liga ao AG
  • ELISA indireto
    A enzima reveladora está ligada ao AC secundário que se liga ao AC
  • ELISA de captura ou em sandwich

    O AG é imobilizado por captura de um AC específico adsorvido na superfície da placa
  • ELISA competitivo

    O AG marcado com enzima compete com o AG contido na amostra do doente para a ligação ao AC imobilizado na placa
  • ELISA
    Enzyme-Linked Immunosorbent Assay
  • Desvantagens da ELISA: Reactividade cruzada pode ocorrer com o anticorpo secondário, resultando num sinal não específico. É necessário um passo extra de incubação.
  • Como amplificar o sinal da ELISA
    Uso de biotina-avidina
  • Método de captura ou em sandwish da ELISA
    O AG é imobilizado por captura de um AC específico adsorvido na superfície da placa
  • Método competitivo da ELISA
    1. AC adsorvido à fase sólida
    2. Adição do AG marcado com enzima + amostra do doente
    3. O AG marcado com enzima compete com o AG contido na amostra do doente para a ligação ao AC imobilizado na placa
    4. Se a amostra do doente tiver o AG específico inibirá a ligação do AG marcado ao AC imobilizado. A cor do substrato modificar-se-á muito pouco ou nada
    5. Se a amostra do doente não tiver o AG, o AG marcado com a enzima ligar-se-á aos ACs imobilizados na placa e, ao adicionar-se o substrato,verificar-se-á uma significativa alteração de cor
  • Método não competitivo da ELISA
    1. Ag adsorvido à fase sólida
    2. Adição da amostra do doente contendo ACs
    3. Incubação
    4. Adição do 2º AC- AC marcado com enzima - vai-se ligar ao AC do paciente
    5. Se a amostra do doente tiver o AC específico este ligar-se-á ao AC marcado. A cor do substrato vai mudar significativamente
    6. Se a amostra do doente não tiver o AC, o AC marcado com a enzima não se vai ligar e, ao adicionar-se o substrato não se irá verificar uma significativa alteração de cor
  • Método competitivo da ELISA
    Quanto maior a concentração da molécula a avaliar, menor a densidade óptica obtida
  • Método não competitivo da ELISA
    Quanto maior a concentração da molécula a avaliar, maior a densidade óptica obtida
  • Técnica de captura antigénica da ELISA
    1. AC imobilizado numa placa de microtitulação
    2. Adição de um AG e ocorre a ligação ao AC
    3. Adição de um 2º AC ligado a uma enzima, liga-se ao AG
    4. Adição de substrato
    5. Alteração de cor
  • Técnica de captura de anticorpos da ELISA
    1. Fixação de um AC de captura ao suporte sólido
    2. Adição da amostra, contendo o AC em investigação
    3. Lavagem
    4. Adição do AG específico para o AC
    5. Adição do anticorpo conjugado a uma enzima
    6. Lavagem do excesso de AG e de anti-AG conjugado
    7. Adição do substrato cromogénico
  • Aplicações práticas da ELISA
    • Deteção de infeções
    • Medição do nível de hormonas
    • Evidenciar contaminação viral
    • Deteção de substâncias alergenicas
    • Diagnóstico de coágulos sanguíneos, alergias, entre outras
    • Deteção de drogas ilícitas
    • Quantificação de toxinas em comida contaminada
    • Medição de fatores reumatóides e outros auto-anticorpos em doenças autoimunes
  • Determinação da concentração de antigénio ou anticorpo por ELISA

    Através de uma curva standard, construída utilizando padrões de antigénio (ou anticorpo) de concentração conhecida, é possível determinar a concentração de antigénio (ou anticorpo) nas amostras desconhecidas
  • Cada grupo terá 1 linha na placa de Elisa
  • FN e AF são iniciais de nomes (se as amostras tiverem números, as letras serão substituídas pelos números das amostras)
  • RIA (RadioImmunoAssay)
    Método sensível para a análise quantitativa das reações AC-AG, permitindo medidas rápidas e precisas, mesmo em preparações não purificadas
  • Sistemas básicos de RIA
    • RIA indireto
    • RIA por competição
    • RIA de captura
  • RIA indireto
    1. Adicionar uma quantidade conhecida de AC que se irá fixar ao suporte sólido
    2. Acrescenta-se um AG marcado, misturado com uma amostra teste ou com soluções padrão com concentrações conhecidas de AG não marcado
    3. Incubação
    4. Separa-se o AG não ligado do complexo marcado e mede-se a radioatividade da fase sólida