imunizace každého zvířete má svůj vlastní protokol
zpracování a optimalizace protokolu
zisk protilátky
otestování protilátky s antigenem navázaným na nosič
použití sekundární protilátky
zpracování biologického vzorku
separace, vhodné naředění protilátek, vizualizace, zpracování záznamu
Elektroforéza a Western blotting
Zavádíme imunodetekci
Doručení nové protilátky
Začíná optimalizace
Imunizace každého zvířete má svůj vlastní protokol
Produkce Ab v 10 vajíčkách je srovnatelná s 1 králíkem
1 slepice dokáže ve vajíčkách vyprodukovat až 42 g protilátek
1 slepice může meziročně nahradit až 20 králíků nebo 4 kozy nebo 4 ovce
Zavádění a optimalizace protokolu
1. Získání protilátky
2. Otestování protilátky s antigenem navázaným na nosič (BSA, KLH)
3. Použití vhodné sekundární protilátky
4. Zpracování biologického vzorku
5. Separace, nalezení vhodného ředění protilátek, vizualizace, zpracování záznamu
Gelová elektroforéza
Pro analýzu proteinů: polyakrylamidový gel
Stupeň zesítění gelu ovlivňuje velikost pórů, malé póry – gelová filtrace
Proteiny putují gelem s různou pohyblivostí (náboj, tvar a velikost molekuly)
% T
Celková koncentrace akrylamidu (Total), tj. AA + BIS
% C
Podíl crosslinkeru vůči celkové koncentraci akrylamidu, tj. BIS/(AA+BIS) *100%
Princip SDS-PAGE v redukčních podmínkách
Redukce disulfidových vazeb
Vazba s dodecylsíranem sodným (SDS)
Udělení jednotného záporného náboje
Protein putuje k anodě
ANODA
Česky ANO, Rusky ano = DA (да), 2x ano –> takže je to kladné ☺
Nanášení vzorků na ztuhlý gel
1. Vzorky v jamkách
2. Sestavená aparatura připravená k zapojení
Barvení proteinů na gelu
Coomassie Brillian Blue (G250, R250)
Reakce s dusičnanem stříbrným, označuje se jako barvení stříbrem
A různé modifikace základních způsobů vizualizace s různou citlivostí, náročností...
Citlivosti běžně používaných metod vizualizace proteinů na gelech
Stříbro
Coomassie Blue
SYPRO Ruby
CyDye
Postup prací při Western blotu
1. Příprava membrány
2. Příprava aparatury
3. Transfer proteinů z gelu na membránu
4. Rozložení aparatury
5. Vizualizace membrán
NC nebo PVDF
Membrány používané pro Western blot
Tank nebo semidry blot
Způsoby transferu proteinů z gelu na membránu
Způsoby vizualizace membrán
Ponceau S
Amidočerň
Protilátky
Proteiny jsou záporně nabité (díky SDS) -> putují k anodě!
Složení kazety – důležité je pořadí gelu a membrány
Blokování membrán pomocí proteinů
1. Zabránění nespecifickým vazbám protilátek na membrány
2. Po WB se membrána blokuje roztokem proteinů
3. Roztok proteinů nesmí poškodit navázané proteiny (např. proteasy nejsou vhodné)
Vysoké pozadí na membráně může být způsobeno špatnou blokací, špatnou protilátkou nebo špatným ředěním sekundární protilátky
Běžně se používá blokování proteiny i detergenty: oplachovací roztoky obsahují oboje
Nejčastěji používaný detergent: SDS (cena x výkon)
Detekce proteinů monoklonální vs. polyklonální protilátky
Monoklonální protilátka váže pouze jeden epitop, polyklonální váže více epitopů
Postup Western blottingu
Příprava vzorku
ELFO
Transfer
Vazba protilátek
Detekce
Záznam
Zpracování dat
Zavedení protokolu pro novou protilátku
Stripování membrán
1. Cílem je odmýt navázanou protilátku z membrány bez vymytí cílených proteinů
2. Stripovací roztok: směs detergentů, redukčních činidel, změn pH, teplota
3. Po stripování je často re-blokace nespecifických skupin na membráně
Výsledkem stripování je čistá membrána připravená k vazbě s jinou protilátkou
Dot blotting
Bez separace, antigen se přímo kape na membránu, promytí balastu, vazba primární protilátky, rychlé a vhodné pro optimalizaci WB – ředění protilátky, výběr substrátu pro sekundární protilátku
Dot blotting je metoda vizualizace antigenu bez předchozí separace
Protilátka funguje i při velkém zředění (1:1600)
Příprava protilátek s označením CRK a CFN
Proč používat Western blotting
Výzkum – postranslační modifikace, detekce, kvantifikace
Klinické aplikace (např. detekce protilátek proti borelióze)